Том 35, номер 06, статья № 5

Андреева И. С., Батурина О. А., Сафатов А. С., Соловьянова Н. А., Аликина Т. Ю., Пучкова Л. И., Ребус М. Е., Буряк Г. А., Олькин С. Е., Козлов А. С., Кабилов М. Р. Концентрация и состав культивируемых микроорганизмов в аэрозолях атмосферного воздуха г. Новосибирска в зависимости от сезона года. // Оптика атмосферы и океана. 2022. Т. 35. № 06. С. 465–470. DOI: 10.15372/AOO20220605.
Скопировать ссылку в буфер обмена

Аннотация:

Исследованы микроорганизмы атмосферных аэрозолей, отобранные в период с сентября 2020 по декабрь 2021 г. в Новосибирске на четырех стационарных точках, различающихся по уровню антропогенного загрязнения. Для отбора атмосферных аэрозолей использована ежемесячная фильтрация атмосферного воздуха с применением армированных тефлоновых мембран Sartorius в течение 12 ч с периодом в две недели. В условиях отбора в числе культивируемых бактерий в зимний период преобладали спорообразующие бактерии рода Bacillus и кокки родов Staphylococcus и Micrococcus. В весенне-летних и осенних пробах атмосферных аэрозолей наблюдалось резкое увеличение концентрации и разнообразия кокковых форм, спорообразующих и неспороносных бактерий, актиномицетов и грибов. В значительном количестве выявлены гемолитические спорообразующие бактерии и стафилококки, полирезистентные к антибиотикам, обладающие ферментами, способствующими развитию инфекционного процесса.

Ключевые слова:

биоаэрозоли атмосферы, микроорганизмы, Новосибирск, сезонная зависимость, концентрация, состав, ферментативные свойства, патогенные свойства

Список литературы:

1. Mohler O., DeMott P.J., Vali G., Levin Z. Microbiology and atmospheric processes: The role of biological particles in cloud physics // Biogeosci. 2007. V. 4, N 4. P. 1059–1071.
2. Gandolfi I., Bertolini V., Ambrosini R., Bestetti G., Franzetti A. Unravelling the bacterial diversity in the atmosphere // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2013. V. 97, N 11. P. 4727–4736.
3. Гинзбург А.С., Губанова Д.П., Минашкин В.М. Влияние естественных и антропогенных аэрозолей на глобальный и региональный климат // Рос. хим. журн. 2008. V. 52, N 5. P. 112–119.
4. О состоянии и об охране окружающей среды Новосибирской области в 2020 году. Новосибирск, 2021. 176 p.
5. Головко В.В., Куценогий К.П., Истомин В.Л. Счетные и массовые концентрации пыльцевой компоненты атмосферного аэрозоля в окрестностях г. Новосибирска в период цветения древесных растений // Оптика атмосф. и океана. 2015. V. 28, N 6. P. 529–533.
6. Голиков Р.А., Суржиков Д.В., Кислицына В.В., Штайгер В.А. Влияние загрязнения окружающей среды на здоровье населения (Обзор литературы) // Научное обозрение. Медицинские науки. 2017. N 5. P. 20–31.
7. Чезганова Е.А., Ефимова О.С., Сахарова В.М., Ефимова А.Р., Созинов С.А., Исмагилов З.Р., Брусина Е.Б. Оценка роли пыли в формировании резервуара мультирезистентных госпитальных штаммов микроорганизмов в отделениях хирургического профиля // Фундаментальная и клиническая медицина. 2020. V. 5, N 1. P. 15–25.
8. Masclaux F.G., Sakwinska O., Charrière N., Semaani E., Oppliger A. Concentration of airborne Staphylococcus aureus (MRSA and MSSA), total bacteria, and endotoxins in pig farms // Ann. Occup. Hyg. 2013. V. 57, N 5. P. 550–557.
9. Safatov A., Andreeva I., Buryak G., Ohlopkova O., Olkin S., Puchkova L., Reznikova I., Solovyanova N., Belan B., Panchenko M., Simonenkov D. How has the hazard to humans of microorganisms found in atmospheric aerosol in the south of Western Siberia changed over 10 years? // Int. J. Environ. Res. Public Health. 2020. V. 17, N 5. DOI: 10.3390/ijerph17051651.
10. Методы общей бактериологии. Т. 3 / под ред. Ф. Герхарда, Р. Мюррэй, Р. Костилоу, Ю. Нестера, В. Вуда, Н. Крига, Г. Филипса. М.: Мир, 1984. 264 p.
11. Определитель бактерий Берджи / под ред. Дж. Хоулта. М.: Мир, 1997. V. 2. 368 p.
12. Руководство по медицинской микробиологии. Общая и санитарная микробиология. Книга I / под ред. А.С. Лабинской, Е.Г. Волиной. М.: БИНОМ, 2008. 1080 p.
13. Ашмарин И.П., Воробьев А.А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Л.: МЕДГИЗ, 1962. 180 p.
14. Safatov A.S., Buryak G.A., Andreeva I.S., Olkin S.E., Reznikova I.K., Sergeev A.N., Belan B.D., Panchenko M.V. Atmospheric bioaerosols // Aerosols – Science and Technology. Wienheim, Germany: Wiley – VCH Verlag GmbH & Co. KGaA, 2010. P. 407–454.
15. Kothari V.V., Kothari R.K., Kothari C.R., Bhatt V.D., Nathani N.M., Koringa P.G., Joshi C.G., Vyas B.R.M. Genome sequence of salt-tolerant Bacillus safensis strain VK, isolated from saline desert area of Gujarat, India // Genome Announc. 2013. V. 1, N 5. DOI: 10.1128/genomeA.00671-13.
16. Park Y.-G., Mun B.-G., Kang S.-M., Hussain A., Shahzad R., Seo C.-W., Kim A.-Y., Lee S.-U., Oh K.Y., Lee D.Y., Lee I.-J., Yun B.-W. Bacillus aryabhattai SRB02 tolerates oxidative and nitrosative stress and promotes the growth of soybean by modulating the production of phytohormones // PLOS one. 2017. V. 12, N 3. DOI: 10.1371/journal.pone.0173203.
17. Shivaji S., Chaturvedi P., Suresh K., Reddy G.S.N., Dutt C.B.S., Wainwright M., Narlikar J.V., Bhargava P.M. Bacillus aerius sp. nov., Bacillus aerophilus sp. nov., Bacillus stratosphericus sp. nov. and Bacillus altitudinis sp. nov., isolated from cryogenic tubes used for collecting air samples from high altitudes // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2006. V. 56, N 7. P. 1465–1473.
18. Mai L.T. Isolation and identification of factors affecting antimicrobial compound production of Bacillus velezensis // Молодой ученый. 2019. № 24. С. 21–27.
19. Ko K.S., Oh W.S., Lee M.Y., Lee J.H., Lee H., Peck K.R., Lee N.Y., Song J.-H. Bacillus infantis sp. nov. and Bacillus idriensis sp. nov., isolated from a patient with neonatal sepsis // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2006. V. 56, N 11. P. 2541–2544.
2o0. Hong H.A., Huang J.-M., Khaneja R., Hiep L.V., Urdaci M.C., Cutting S.M. The safety of Bacillus subtilis and Bacillus indicus as food probiotics // J. Appl. Microbiol. 2008. V. 105, N 11. P. 510–520.
21. Miller R.A., Beno S.M., Kent D.J., Carroll L.M., Martin N.H., Boor K.J., Kovac J. Bacillus wiedmannii sp. nov., a psychrotolerant and cytotoxic Bacillus cereus group species isolated from dairy foods and dairy environments // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2016. V. 66, N 11. P. 4744–4753.
22. Kanso S., Greene A.C., Patel B.K.C. Bacillus subterraneus sp. nov., an iron- and manganese-reducing bacterium from a deep subsurface Australian thermal aquifer // Int. J. Sys. Evol. Microbiol. 2002. V. 52, N 4. P. 869–874.
23. Sarkhoo E., Udo E.E., Boswihi S.S., Monecke S., Mueller E., Ehricht R. The dissemination and molecular characterization of clonal complex 361 (CC361) methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) in Kuwait hospitals // Front. Microbiol. 2021. V. 12. DOI: 10.3389/fmicb.2021.658772.
24. Coombs G.W., Monecke S., Pearson J.C., Tan H.L., Chew Y.K., Wilson L., Ehricht R., O’Brien F.G., Christiansen K.J. Evolution and diversity of community-associated methicillin-resistant Staphylococcus aureus in a geographical region // BMC Microbiol. 2011. V. 11. DOI: 10.1186/1471-2180-11-215.
25. Zhuang M., Achmon Y., Cao Y., Liang X., Chen L., Wang H., Siame B.A., Leung K.Y. Distribution of antibiotic resistance genes in the environment // Environ. Pollut. 2021. V. 285. DOI: 10.1016/j.envpol.2021.117402.
26. Gwenzi W., Shamsizadeh Z., Gholipour S., Nikaeen M. The air-borne antibiotic resistome: Occurrence, health risks, and future directions // Sci. Total Environ. 2022. V. 804. DOI:  10.1016/j.scitotenv.2021.150154.